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【图文导读】图1.IL-10+细胞外囊泡的制备和表征(A)用RFP标记的IL-10转染RAW细胞,经研然后用地塞米松刺激(B)在工程RAW细胞中对IL-10(绿色)和EV标记CD63(红色)进行免疫染色(C)在IL-10+细胞外囊泡中对EV相关的(Alix,经研CD63和CD81)和巨噬细胞相关的标志物(CD68和CD206)进行蛋白质印迹分析(D)IL-10+细胞外囊泡的尺寸分布和代表性TEM图像(E)显示从抗体阵列分析获得的每种细胞因子的蛋白质水平(F)细胞外囊泡中IL-10的ELISA分析,以及IL-10+细胞外囊泡中的IL-10和IL-10受体的蛋白质印迹分析(n=3或6)(G)通过实时定量PCR测量IL-10+细胞外囊泡中的IL-10mRNA(H-1)比较IL-10+细胞外囊泡和游离IL-10在不同条件下的稳定性,包括在37°C或-80°C下放置一周,在pH5.5溶液中12小时图2.肾靶向IL-10+EV(A)以亲代RAW细胞为对照的IL-10+EVs蛋白质组成的LC-MS/MS分析(B)蛋白质印迹分析(C-E)为了分析体内分布,给小鼠静脉注射DID标记的IL-10+EV(n=3)(C)注射后6、12、24、48和96小时(缺血时间35分钟)对指定器官的荧光强度成像(D)缺血20分钟,28分钟和35分钟的IRI肾脏在12小时时的荧光强度成像(E)代表性共聚焦图像显示DID标记的IL-10+EV在小管(包括近端小管和远端小管),内皮细胞(CD31)和巨噬细胞(CD68)中的蓄积(F-G)H/R诱导的TECs摄取PKH67标记的IL-10+EV(n=3)图3.IL-10+EV可预防小鼠的肾脏I/R损伤(A)实验设计示意图(B)IL-10+EV对血清肌酐的影响(n=10)(C)基于H&E染色的肾小管损伤的量化(n=10)(D)肾皮质和髓质的H&E染色的代表性图像(E-G)TUNEL染色和凋亡细胞定量的代表性图像(n=6)(F-H)代表性共聚焦图像和KIM-1+小管的定量(n=6)(I)肾脏组织中caspase-3的蛋白质印迹分析(n=3)(J)实时定量PCR分析肾脏组织中炎性细胞因子mRNA水平(n=6)图4.IL-10+EVs抑制mTOR信号传导并诱导线粒体保持线粒体稳态(A)肾组织中mTOR信号和LC3的蛋白质印迹分析(n=3)(B)肾小管自噬事件的代表性TEM图像(C-E)评估IL-10+EV对培养的TEC中线粒体功能的影响(n=3)(F)肾小管中线粒体的代表性TEM图像(G)肾脏切片中细胞色素C氧化酶亚基I(MT-CO1)表达的免疫组织化学分析(H)线粒体呼吸链复合体I的酶活性(n=6)图5.IL-10+EVs引起肾巨噬细胞表型转变(AB)分别用LPS,IL-4+IL-13或不同剂量的IL-10+EV刺激BMDM48小时(n=3)(C-E)IRI组与IL-10+EV组之间肾巨噬细胞表型变化的探讨图6.IL-10+EV抑制AKI-CKD转变(A)PAS染色的代表性图像(n=6)(B)矢状面Masson三色染色的代表性图像(n=6)(C)肾组织中胶原蛋白I和α-平滑肌肌动蛋白(β-SMA)的蛋白质印迹分析(n=4)(D)肾脏切片中CD68+巨噬细胞和CD3+T细胞的代表性共聚焦图像(n=6)(E)用于治疗缺血性AKI的IL-10+EV制剂的示意图【小结】细胞外囊泡(EVs)用作天然药物递送系统已引起强烈的研究兴趣。近年来,院特开发了多种材料用作ZIBs正极,其中钒(V)基材料显示出较高的理论比容量和优异的循环稳定性。
(b)在1Ag-1时,综合不同弯曲状态下的充放电曲线。数字收(e,g)c-V2O3@C和a-V2O5@C的TEM图像。
化管(e)比较已报道钒氧化物基复合电极的ZIBs和带有a-V2O5@C电池的能量和功率密度。控系文献链接:ElectrochemicallyInducedMOF-DerivedAmorphousV2O5forSuperiorRateAqueousZn-IonBatteries.(Angew.Chem.Int.Ed.,2020,DOI:10.1002/anie.202010287)本文由CQR编译。